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Architecture Cellulaire

Projets en cours

>> Open Ph.D. student position: Microtubule organizing center (MTOC) fingerprint <<

Microtubules (MTs) are crucial for cell division and directional cell migration and, thus, tumor growth and metastasis. MT organizing centers (MTOCs) transmit distinct characteristics to the associated MTs. So, exhibit MTs organized by the centrosome more repair sites and slower motor protein-mediated transport than MTs associated with the Golgi apparatus, which is the other major MTOC in many mammalian cell types. The mechanisms by which MTOCs leave such functional “fingerprints” on MTs are still unknown but likely depend on the recruitment of MT-associated proteins (MAPs).  

We will describe these fingerprints in more detail and aim to determine what principal types of MAPs might confer these characteristics from the MTOCs to the MTs and how they are distributed along MT filaments to do so. For this, we will employ genetic and pharmacological perturbations and characterize MTs (ultra-) structurally employing focused ion beam milling enabled in-situ cryo-electron tomography combined with a dedicated subtomogram averaging pipeline.
 

Desired skill set:   

-Initial experience with mammalian cell culture  

-Initial experience with light and, in an optimal case, also electron microscopy 

-Basic programming skills and first experience with Linux  

-Capability to access the central concepts of a biological research area based on literature research 

-Fluency in English (written and spoken)   
 

Expertise that will be acquired during the Ph.D. studies:  

-Advanced culturing of mammalian cells, including CRISPR-based technologies for genetic engineering and pharmacological treatments 

-Complete in situ structural biology workflows, including cryo-electron tomography, from specimen preparation via data acquisition to image processing  

-Using and building software tools for the quantitative computational analysis of three-dimensional ultrastructural data

-Scientific independence to conduct and present an elaborate, cross-disciplinary project
 

Send the following application documents (in English) compiled as a single PDF latest on the 26th of July 2024 to florian.faessler@igbmc.fr:  
-A motivation letter covering your education/scientific experiences and how they have prepared/motivated you to work on this project (max. 1 page)
-Your CV
-Your Master’s degree and the corresponding transcripts
-A description of the central experiment of your Master Thesis or M2 work and what kind of follow-up work experiment you would propose (max. 1 page)
-The names and contacts of 2 referees 

 

Décryptage des mécanismes (ultra)structuraux de l'organisation du Golgi (Delnia Nazari Banyarani, Doctorante)

La glycosylation correcte des protéines dans le système endomembranaire est cruciale pour de nombreux processus biologiques, tels que le tri lysosomal, la structuration de la matrice extracellulaire et la transduction des signaux. Une mauvaise glycosylation est associée à la neurodégénérescence, au cancer et aux maladies auto-immunes. Il est donc vital pour les cellules de maintenir l'ordre de leur plaque tournante de modification des glycanes, l'appareil de Golgi.

Dans ce contexte, la matrice de Golgi, de concert avec d'autres acteurs tels que le cytosquelette, guide la distribution des protéines entre les différentes citernes de Golgi, contrôle leur forme et les maintient empilées. Néanmoins, la manière dont la matrice de Golgi elle-même est structurée pour réaliser ces fonctionnalités reste largement inconnue, car l'utilité des approches classiques basées sur la microscopie à fluorescence, la microscopie électronique à température ambiante et la reconstitution in vitro est limitée par la petite taille et la grande complexité du système. Pour y remédier, nous utiliserons la tomographie cryoélectronique in situ de pointe pour visualiser la matrice de Golgi et ses interacteurs. L'application de la moyenne des sous-tomogrammes à des acteurs sélectionnés nous permettra de déterminer leurs structures à une résolution (sub)nanométrique dans leur environnement intracellulaire.
Nous disposerons ainsi d'un cadre (ultra-) structurel pour l'intégration des données orthogonales fournies par les techniques de génétique inverse, de biologie cellulaire et de biochimie. Ensemble, nous utiliserons ces approches pour fournir des informations sans précédent sur la relation structure-fonction de l'organisation de l'appareil de Golgi.

 

Cryo-CLEM labels for minimizing artifacts and background (Deborah Cezar Mendonca, PostDoc)

La tomographie cryo-électronique (cryo-ET) peut fournir des informations ultrastructurales uniques sur l'architecture moléculaire des cellules conservées nativement. En la combinant avec le calcul de la moyenne des sous-tomogrammes (STA), il est possible de déterminer in situ des structures d'une résolution inférieure au nanomètre. Cependant, la localisation des protéines d'intérêt (POI) dans les cellules pendant l'acquisition et le traitement des données reste un goulot d'étranglement pour cette approche. Pour résoudre les structures du complexe Arp2/3 dans son état de jonction de branche, nous avons récemment utilisé son accumulation spécifique dans les lamellipodes et son intégration caractéristique dans les réseaux d'actine pour sélectionner des sites cibles pour les séries d'inclinaison et les positions de particules individuelles, respectivement. Pour les POI, dont la localisation est moins prévisible à partir de la seule morphologie cellulaire, l'utilisation de POI marqués par fluorescence pour la cryo-microscopie électronique et lumineuse corrélative (cryo-CLEM) peut guider la préparation des lamelles et l'acquisition des données. Cependant, les données de la microscopie à fluorescence (FM) ne permettent généralement pas d'identifier les POI dans les tomographies cryo-électroniques en vue d'un traitement ultérieur.
Ainsi, une approche de marquage des protéines dans les deux modalités d'imagerie serait hautement souhaitable. Au mieux, l'étiquette résultante devrait être capable de recruter des fluorophores synthétiques perméables à la membrane pour permettre une détection fiable des POIs à des niveaux d'expression endogènes en FM, résulter en une forte densité de forme unique en cryo-ET, et causer des perturbations négligeables pour la physiologie cellulaire et la fonction de la protéine. Ce projet vise à fournir un système de marquage cryo-CLEM à deux composants codé génétiquement qui puisse répondre à ces exigences difficiles.

Financements et partenaires

Fichier:Centre national de la recherche scientifique.svg — Wikipédia       IMCBio International PhD Program   

 

 

Recent publications

B. Zens, F. Fäßler, J. M. Hansen, R. Hauschild, J. Datler, V.-V. Hodirnau, V. Zheden, J. Alanko, M. Sixt, F. K. M Schur (2023):
Lift-out cryo-FIBSEM and cryo-ET reveal the ultrastructural landscape of extracellular matrix.
Journal of Cell Biology. 223, 6

F. Fäßler, M. G. Javoor, F. K. M. Schur (2023):
Deciphering the molecular mechanisms of actin cytoskeleton regulation in cell migration using cryo-EM.
Biochemical Society Transactions. 51, 87–99

F. Fäßler, M. G. Javoor, J. Datler, H. Döring, F. W. Hofer, G. Dimchev, V.-V. Hodirnau, J. Faix, K., Rottner, F. K. M. Schur (2023):
ArpC5 isoforms regulate Arp2/3 complex–dependent protrusion through differential Ena/VASP positioning.
Science Advances. 9, eadd6495

W. J. Nicolas, F. Fäßler, P. Dutka, F. K. M. Schur, G. Jensen, E. Meyerowitz (2022):
Cryo-electron tomography of the onion cell wall shows bimodally oriented cellulose fibers and reticulated homogalacturonan networks.
Current Biology. 32, 2375-2389.e6

G. Dimchev, B. Amiri, F. Fäßler, M. Falcke, F. K. M. Schur (2021):
Computational toolbox for ultrastructural quantitative analysis of filament networks in cryo-ET data.
Journal of Structural Biology. 213, 107808

F. Fäßler, G. Dimchev, V.-V. Hodirnau, W. Wan, F. K. M. Schur (2020):
Cryo-electron tomography structure of Arp2/3 complex in cells reveals new insights into the branch junction.
Nat Commun. 11, 6437

F. Fäßler, B. Zens, R. Hauschild, F. K. M. Schur (2020):
3D printed cell culture grid holders for improved cellular specimen preparation in cryo-electron microscopy.
Journal of Structural Biology. 212, 107633

Biologie structurale intégrative